Actividad antioxidante del gel a base de extracto de Origanum vulgare ¿Importante para la salud bucal? Estudio preliminar
DOI:
https://doi.org/10.20453/reh.v31i1.3921Palabras clave:
antioxidantes, estrés oxidativo, Origanum vulgare, radicales libres, salud bucalResumen
Objetivo: Determinar la actividad antioxidante del extracto hidroalcohólico de Origanum vulgare a través de 03 métodos de ensayo DPPH, ABTS y FRAP. Material y métodos: La muestra recolectada de Origanum vulgare se secó, redujo el tamaño y se colocó a macerar 500 gramos de muestra seca en 1000 mL de etanol 97% durante una semana. Pasado el tiempo se procedió a filtrar el macerado y se concentró en estufa. Se procedió a realizar las formulaciones. Estas diluciones, se sometieron a los análisis antioxidantes. Resultados: Método DPPH, el gel al 25% mostró un IC50 de 98,485 mg/mL equivalente a la dilución del 78,789% y para el caso del estándar Trolox® presentó un IC50 de 2,48 µg/mL. Método ABTS, la formulación de gel al 25% presentó un IC50 de 3,687 mg/mL equivalente a una dilución de 77,75% y para el estándar Trolox® presentó un IC50 de 2,99 µg/mL, a diferencia de las otras formulaciones. Se evidenció relación entre el porcentaje de inhibición y concentración de las muestras con una correlación aceptada (R2) para geles al 25%, 50%, 75% de extracto de Origanum vulgare y Trolox® de 0,9972; 0,9987 y 0,9986 respectivamente. Método FRAP, observó acción rápida durante los 4 minutos, siendo 125 mg de extracto contenido en el gel de 25% equivalente a 4mg de Trolox®. Conclusiones: Se determinó la actividad antioxidante equivalente al Trolox®, mediante análisis antioxidante, con mejor poder de captación de radical libre promedio (Trolox/mg) de extracto y estuvo presente en el gel a base de Extracto de Origanum vulgare al 25%.
Citas
Valdés JM, Padrón R, El Ghannam Y. Estrés oxidativo en las enfermedades bucales. Rev Cubana Estomatol. 2016; 53 (4): 1-8.
Bhateja S. Role of antioxidants in oral medicine. Int JPharm Sci Res. 2012; 3 (7):1971-1975.
Singh N, Niyogi R, Mishra D, Sharma M, Singh D. Antioxidants in oral health and diseases: Future Prospects. JDMS. 2013; 10 (3):36-40.
Kesarwala AH, Krishna MC, Mitchell JB. Oxidative stress in oral diseases. Oral Dis. 2016; 22(1):9-18.
Pedraza J, Eugenio D, Molina E. Uso de Activadores Naturales de Nrf2 en diversas condiciones patológicas. En: Cárdenas C, González M, Guevara A, Lara R, Matuz D, Molina E, Torres PV. Mensaje Bioquímico. México DF: Facultad de Medicina, Universidad Nacional Autónoma de México; 2016.p. 211-230.
Guija-Poma E, Inocente-Camones MA, Ponce-PardoJ,Zarzosa-NorabuenaE.Evaluacióndelatécnica 2,2-Difenil-1-Picrilhidrazilo (DPPH) para determinar capacidad antioxidante. Horiz Med. 2015; 15(1): 57-60.
Gómez J, Morales G, Ortiz Y, et al. Disminución del daño nuclear y oxidativo al ADN en pacientes con periodontitis después de la ingesta de ácido fólico. Rev Mex Periodontol. 2015;6(3):121-128.
Rodríguez T, Peña M, Gómez N, Santisteban L, Hernández M. Estrés oxidativo: genética, dieta y desarrollo de enfermedades. Correo Científico Médico de Holguín. 2015; 19(4):690-705.
Oroian M, Escriche I. Antioxidants: Characterization, natural sources, extraction and analysis. Food Res Int. 2015; 74: 10-36.
Hoyos-Arbeláez J, Vázquez M,Contreras-CalderónJ. Electrochemical methods as a tool for determining the antioxidant capacity of food and beverages: A review. Food Chemistry. 2017; 221: 1371-1381.
Fernandes RPP, Trindade MA, Tonin FG, et al. Evaluation of oxidative stability of lamb burger with Origanum vulgare extract. Food Chem. 2017; 233: 101–109.
Portes W, Gardrat C, CastellanA. A comparativestudy ontheantioxidantpropertiesoftetrahydrocurcuminoids and curcuminoids. Tetrahedron 2007; 63 (37): 9092–9099.
Kuskoski EM, Asuero AG, Troncoso AM, Mancini-Filho J, Fett R. Aplicación de diversos métodos químicos para determinar actividad antioxidante en pulpa de frutos. Cienc. Tecnol Aliment. 2005; 25(4): 726-732.
Sonawane SK, Arya SS. Citrullus lanatus protein hydrolysate optimization for antioxidant potential. Food Measure. 2017; 11:1834–1843.
Organización Mundial de la Salud.Salud bucodental. Ginebra: Organización Mundial de la Salud; 2020. (Fecha de acceso: 25 de marzo 2020). Disponible en: https://www.who.int/es/news-room/fact-sheets/detail/oral-health
Granato D, Shahidi F, Wrolstad R. et al. Antioxidant activity, total phenolics and flavonoidscontents: Should weban in vitro screening methods?Food Chem. 2018; 264: 471–475.
Gayoso L, Roxo M, Cavero RY, et al. Bioaccessibility andbiologicalactivityofMelissaofficinalis,Lavandula latifolia and Origanum vulgare extracts: Influence of an in vitro gastrointestinal digestion. Journal of Functional Foods. 2018; 44:146-154.
García-Pérez JS, Cuéllar-Bermúdez SP, de la Cruz-Quiroz R. et al. Supercritical CO2 based tailor made valorization of Origanum vulgare L extracts: A green approachtoextracthigh-valuecompoundswithapplied perspectives. J Environ Manag. 2019; 232:796-802.
Karadag A, Ozcelik B, Saner S. Review of Methodsto Determine Antioxidant Capacity. Food Anal. Methods. 2009;2(1):41–60.
Kedare SB, Singh RP. Genesis and development of DPPHmethodofantioxidantassay.JFoodSciTechnol. 2011;48(4):412-22.
Krishnaiah D, Sarbatly R, Nithyanandam R. A review of the antioxidant potential of medicinal plant species. Food and Bioproducts Processing. 2011; 89(3): 217-233.
Carbonel KN, Suárez SA, Salas AI. Características fisicoquímicas y capacidad antioxidante in vitro del extracto Gentianella nítida. An Fac Med. 2016; 77(4): 333-7.
Harnly J. Antioxidant methods. J Food Comp Anal. 2017; 64 (Part 2): 145-146.
Granato D, Sousa J, Galvao L, Sávio D. Chemical perspectiveandcriticismonselectedanalyticalmethods usedtoestimatethetotalcontentofphenoliccompounds infoodmatrices.TrendsinAnalyticalChemistry.2016; 80: 266-279.
Cavero S, García-Risco MR, Marín FR, et al. Supercriticalfluidextractionofantioxidantcompounds fromoregano:Chemicalandfunctionalcharacterization viaLC–MS and in vitro assays. J of Supercritical Fluids. 2006; 38(1):62-69.
Moghrovyan A, Sahakyan N, Babayan A, Chichoyan N, Petrosyan M, Trchounian A. Essential Oil and Ethanol Extract of Oregano (Origanum vulgare L.) from ArmenianFlora as a Natural Source of Terpenes, Flavonoids and other Phytochemical swith Antiradical, Antioxidant, Metal Chelating, Tyrosinase Inhibitory and Antibacterial Activity. Curr Pharm Des. 2019; 25(16):1809-1816.
Fierascu RC, Ortan A, Fierascu IC, Fierascu I. In vitro and in vivo evaluation of antioxidant properties of wild-growing plants. A short review. Curr. Opin. Food Sci. 2018; 24:1-8.
Teixeira B, Marques A, Ramos C, et al. Chemical composition and bioactivity of different oregano (Origanum vulgare) extracts and essential oil. J Sci Food Agric. 2013;93(11):2702-14.
Méabed EMH, El-Sayed NM, Abou-Sreea AIB,Roby MHH. Chemical analysis of aqueous extracts of Origanum majorana and Foeniculum vulgare and their efficacy on Blastocystis spp. cysts. Phytomedicine. 2018; 43:158-163.
Chun SS, Vattem DA, Lin YT, Shetty K. Phenolic antioxidants from clonal oregano (Origanum vulgare) with antimicrobial activity against Helicobacter pylori. Process Biochemistry. 2005;40(2):809-816.
Fenoy I. Influencia de los antioxidantes, ascorbato de sodio y alfa tocoferol,en la fuerza de adhesión a esmalte previamente blanqueado con dentífricos blanqueadores. Tesis Doctoral. Barcelona, España: Universitat Internacional de Catalunya; 2017. pp.155.
Publicado
Cómo citar
Número
Sección
Licencia
Los autores conservan los derechos de autor y ceden a la revista el derecho de primera publicación, con el trabajo registrado con la Licencia de Creative Commons, que permite a terceros utilizar lo publicado siempre que mencionen la autoría del trabajo, y a la primera publicación en esta revista.
